1.一種利用骨架蛋白Fn3在大腸桿菌體內建立N-糖基化效率檢測受體蛋白模型的方法,其特征在于,包括以下步驟:(1)、Fn3突變體Fn3-Gly-loop重組蛋白基因表達載體構建:1)根據Fn3骨架蛋白晶體結構,用PyMOL軟件進行蛋白質模建設計糖基化位置,分別在Fn3蛋白loop區通過編碼柔鏈GGGGS引入編碼糖基化位點序列DQNAT,再通過編碼柔鏈GGGGS引入編碼6個組氨酸殘基堿基序列,糖基化突變位點即GGGGSDQNATGGGGSHHHHHH;2)根據大腸桿菌密碼子偏好性,合成Fn3-Gly-loop基因,并克隆到pIG6H質周腔表達載體上,形成攜帶Fn3-Gly-loop基因的表達載體,命名為pIG6H-Fn3-Gly-loop;3)將pIG6H-Fn3-Gly-loop與攜帶來源空腸彎曲菌的N-糖基化基因簇載體的pACYCpgl載體,在大腸桿菌質周腔內共同表達,該載體攜帶的基因簇用于合成寡糖,其寡糖分子組成為GalNAc-α1,4-GalNAc–α1,4-(Glc–β1,3-)GalNAc-α1,4-GalNAc–α1,4-GalNAc-α1,3-Bac-β1;(2)、將步驟2)中構建的載體及pACYCpgl用電擊法共同轉化到大腸桿菌工程菌株CLM37,經抗生素篩選得到陽性克隆,此陽性克隆表達的重組蛋白就含有將被重組糖基修飾的Fn3-Gly-loop蛋白,具體步驟為:將陽性克隆接種到含有100微克每毫升的氨芐青霉和37微克每毫升的氯霉素的LB固體培養基平板上,每升LB固體培養基中含胰蛋白胨10克、酵母提取物5克、氯化鈉10克和15克瓊脂粉,過夜24小時培養,篩選出單克隆后將其接種到含有100微克每毫升的氨芐青霉素和37微克每毫升的氯霉素的LB液體培養基,過夜16小時培養;以1:100接種到10毫升含有100微克每毫升的氨芐青霉素和37微克每毫升的氯霉素的LB液體培養基的三角瓶中,200rpm、37℃培養,直至OD600達到0.6;以1:100接種到100毫升含有100微克每毫升的氨芐青霉素和37微克每毫升的氯霉素的自動誘導培養基中,在25-35℃、200rpm條件誘導表達24小時,在此過程,在大腸桿菌胞內表達重組蛋白Fn3-Gly,自動誘導培養基的配方為:每升培養基中含有以下重量的各組分:胰蛋白胨10克,酵母提取物5克,甘油5克,葡萄糖0.5克,乳糖2克,磷酸氫二鈉7.1克,磷酸二氫鉀6.8克,硫酸銨3.3克,硫酸鈉0.9克,七水硫酸鎂0.25g;(3)、收集菌體裂解后Western Blot法檢測Fn3-Gly-loop融合蛋白糖基化效率。
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