1.磁捕獲技術在NF-κB蛋白分離與檢測中的應用方法,其特征是包括下列操作步驟:
(1)制備細胞蛋白抽提物:
1)離心收集血淋巴細胞和粉蚊夜蛾細胞,用預冷的PBS洗1次,加入細胞裂解液4℃溶解
40分鐘,其間不斷地輕微震蕩細胞溶液;
2)4℃12000×g離心20分鐘,取上清,于-20℃儲存;
(2)生物素標記NF-κB探針的制備:
隨機選取一段100bp大小的DNA設計引物進行PCR擴增,上游引物BioF:
GCACCTCAGCAAGCACCTGCTCGCTC在其5’末端標記生物素,下游引物BioRw:
CCTGGGAAAGTCCCCTCACACTCGTAGC含有一個NF-κB結合位點,PCR產物經2%瓊脂糖
凝膠電泳,回收純化目的片段即為生物素標記的NF-κB探針;經同樣的方法,以引物BioF和
BioRm?CCTG?TTTGCTTACCCTCACACTCGTAGC合成對照探針;
(3)NF-κB標記探針與磁珠連接:
雙鏈DNA探針末端標記有生物素,能與鏈霉親和素包被的磁珠連接,取2mg
![]()
M-280磁珠,用1×B&W緩沖液洗兩遍,加入100pmol標記了的NF-κB探針,室溫結合20min,
未結合的探針通過磁分離器洗脫去除;
(4)NF-κB蛋白與DNA探針結合:
向盛有上述磁珠的微量離心管中加入300μl的結合緩沖液,棄緩沖液,加入400μl血細胞
蛋白抽提物,20μl濃度為1mg/ml的非特異競爭DNA即poly[d(I-C)],室溫中緩慢搖動反應1h;
(5)磁場分離NF-κB蛋白:
將上述反應的微量離心管置于磁分離器中2min,用移液槍緩慢去除反應液;
(6)洗脫捕獲的NF-κB蛋白:
用300μl的結合緩沖液清洗磁珠,棄去洗液,加入40μl的洗脫液,用移液槍緩慢吹打數次,
在磁分離器中分離洗脫下的蛋白;
(7)用抗體進行Western蛋白印跡檢測洗脫的蛋白。